Datenmanagement und Datenpräsentation mit der begleitenden NucleoView™ Software. Die Software erlaubt die einfache Kopplung zwischen dem generierten Fluoreszenzbild und den Diagrammen für eine präzise Kontrolle der Daten. Protokolle können für zukünftige Messungen abgespeichert werden, wodurch die Reproduzierbarkeit mit diesem Zellanalyseinstrument entscheidend verbessert wird

Die NucleoView™ Software erlaubt die visuelle Inspektion des Fluoreszenzbildes und hält die Option bereit, das Messergebnis zu verifizieren. Verschiedene Event Populationen können in den Punktediagrammen ausgewählt und überprüft werden, sowie wenn nötig von dem Endergebnis ausgeschlossen werden. Die adaptierten Protokolle können für zukünftige Messungen abgespeichert werden, wodurch die Reproduzierbarkeit entscheidend verbessert wird.

Der NucleoCounter^® NC-3000™ beitet eine robuste und glaubwürdige Lösung für die Bestimmung der Zellzahl in klumpigen und aggregierten Zellkulturen. Für die Zellkernfärbung werden Fluoreszenzfarbstoffe verwendet, und ein präziser Algorithmus detektiert und segmentiert einzelne Zellen in kleineren Aggregaten. Weiterhin wird der Anwender über die prozentuale Aggregation der Zellprobe informiert. Sollte die Zellprobe zu klumpig sein und der Aggregationsfaktor zu hoch, kann auf einen spezialisierten Assay für aggregierte Zellen umgestellt werden. Hierbei wird die Zellsuspension mit einem Lysepuffer inkubiert, die Zellmembran permeabilisiert und die Zellkerne zuverlässig ausgezählt. Diese Methode der Zelllyse kann auch für die Zellzahlbestimmung von primären Stammzellen, für Zellen kultiviert auf Microcarriern oder in Sphäroiden verwendet werden.

Einfache Bestimmung der Zellzahl und der Viabilität von aggregierten Zellen. In zwei einfachen Schritten wird die Gesamtzellzahl und die Anzahl an toten Zellen bestimmt.

Ein Zellzyklus-Assay gehört zu den grundlegendsten Methoden, um zelluläre Veränderungen während der Zellteilung festzustellen. Mit dem NucleoCounter^® NC-3000™ kann ein sehr einfacher Zellzyklus-Assay innerhalb von 5 Minuten durchgeführt werden. Durch die begleitende Software wird ein Zellzyklus-Histogramm erstellt. Anschließend kann der Anteil der Zellen in den verschiedenen Phasen des Zellzykluses (Sub-G1, G0/G1, S, G2/M) analysiert werden.

Der Zellzyklus von Jurkat Zellen mit und ohne Camptothecin (CPT). Aufgetragen wurde die Intensität des DAPI Signals in einem Histogramm zur Identifizierung der einzelnen Zellzyklus-Phasen Sub-G1, G0/G1, S und G2/M. Nach der Inkubation mit CPT war die Sub-G1 Phase und damit die Anzahl an apoptotischen Zellen erhöht.