Zellzählung von nukleären Zellen aus dem Vollblut
Mit den NucleoCounter® Instrumenten
Die Bestimmung der Viabilität und Konzentration von nukleären Zellen im Blut ist ein wichtiger Parameter für die immunologische Forschung. Die NucleoCounter® Instrumente stellen eine schnelle und kostengünstige Alternative zu herkömmlichen Hämatologie-Analysatoren dar. Sie gewährleisten die zuverlässige Lyse der Erythrozyten und färben mit zwei Fluoreszenzfarbstoffen die Zellkerne an. Die Analyse selbst dauert nur 50 Sekunden und erfordert keine Aufwärmzeit oder Kalibrierung des Instrumentes. So ist der NucleoCounter® das ideale Instrument für Forschungs- und Bioprozesslaboratorien. Im Gegensatz zu Hämatologie-Analysatoren kann der NucleoCounter® auch für kultivierte Zellen verwendet werden.
Schnelle und einfache Bestimmung der Zellzahl und der Viabilität von nukleären Zellen aus dem Vollblut

Häufig werden Hämatologie-Analysatoren verwendet, um nukleäre Zellen direkt aus dem Vollblut zu zählen und zu charakterisieren. Jedoch sind viele Hämatologie-Analysatoren komplex und teuer. Im Gegensatz dazu bieten die NucleoCounter® Instrumente ein einfaches und schnelles Protokoll zur präzisen Bestimmung der Viabilität und der Zellzahl direkt aus dem Vollblut. Ein Erythrozyten-Lysepuffer wird mit der Blutprobe inkubiert und durch die NucleoCounter® Instrumente mit der Via1-Cassette™ oder den NC-Slides™ analysiert (Abbildung 1). Diese Methode der Zellzahlbestimmung kann für die verschiedensten Zellproben angewendet werden, z.B. für T-Zellen in adoptiven Immuntherapien oder für mesenchymale Stammzellen aus dem Knochenmark.
Zellzählung direkt aus dem Vollblut
Abbildung 2. Präzise Zellzählung direkt aus dem Vollblut
Durch Zugabe von Lösung 17 – einem Ammoniumchlorid-Puffer – zu der Blutprobe werden Erythrozyten lysiert und die nukleären Zellen mit Acridinorange (alle Zellen) und DAPI (tote Zellen) angefärbt. Anschließend können die kernhaltigen Zellen mit den NucleoCounter®-Instrumenten zuverlässig detektiert werden.
Für die Zellzählung wird die Vollblutprobe mit Lösung 17 inkubiert. Dieser Erythrozyten-Lysepuffer enthält Ammoniumchlorid für die osmotische Lyse der Erythrozyten, sowie zusätzlichen Fluoreszenzfarbstoff um den quenchenden Effekt des Hämoglobins zu kompensieren. Nach einer kurzen Inkubationszeit wird die Probe mit den beiden Fluoreszenzfarbstoffen Acridinorange und DAPI angefärbt, z.B. über die Via1-Cassette™, welche bereits Acridinorange und DAPI für die Zellfärbung enthält (Abbildung 2). Hierbei färbt Acridinorange alle Zellen und DAPI nur die toten Zellen an. Zur Bestimmung der Viabilität und der Zellzahl wird automatisch das Fluoreszenzbild von den NucleoCounter® Instrumenten aufgenommen und die Ergebnisse berechnet. Die NucleoView™ Software ermöglicht eine einfache Kopplung zwischen dem Fluoreszenzbild und den Punktediagrammen, welche die präzise Verifizierung der Ergebnisse erlauben.

Viability and Cell Count Whole Blood Assay
Die Bedeutung der nukleären Zellen im Blut
Vollblut wird oftmals als Ausgangsmaterial im Bereich der Lebenswissenschaften verwendet und besteht aus einer Mischung verschiedenster Zelltypen, z.B. Lymphozyten, Monozyten, Granulozyten, hämatopoetische Stammzellen sowie Erythrozyten und Thrombozyten. Besonders die nukleäre Zellfraktion ist interessant für die Impfstoff- und Assay-Entwicklung, Transplantationsimmunologie und Krebsforschung. Da die Aufreinigung von verschiedenen Subpopulationen aus dem Vollblut in der Regel zeitaufwändig und teuer ist, kann mit den NucleoCounter® Instrumenten die Anzahl der kernhaltigen Zellen vor und während des gesamten Isolationsprozesses routinemäßig überwacht werden. Hierdurch erlauben die NucleoCounter® Instrumente eine Qualitätssicherung der Blutproben nach dem Versand oder der Lagerung. Die NucleoCounter® Instrumente können z.B. für die Assay-Auswertung in präklinischen Tierversuchen oder für die Bestimmung der Zellzahl aus Knochenmark-Aspiraten verwendet werden.
Literatur
- Zhang, M. and B. Huang, The multi-differentiation potential of peripheral blood mononuclear cells. Stem Cell Research & Therapy, 2012. 3(6): p. 48-48.
- Park, B., K.H. Yoo, and C. Kim, Hematopoietic stem cell expansion and generation: the ways to make a breakthrough. Blood research, 2015. 50(4): p. 194-203.
- Crippen TL, et al., Analysis of salmonid leukocytes purified by hypotonic lysis of erythrocytes. Journal of Aquatic Animal Health, 2001. 13: p. 234-245.
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